hoechst可以穿過活細(xì)胞膜與細(xì)胞核結(jié)合 (主要為凋亡活細(xì)胞)在紫外光下

將核染為藍(lán)色. Hoechst染細(xì)胞核會影響共聚焦顯微鏡對該樣本其他熒光的觀察效果.hoechst有hoechest33342和hoechst33258兩種  hoechsts33258，hoechst33342二者區(qū)別不大，但是hoechst33342對細(xì)胞的毒性作用更小一些，所以一般來說hoechsts33258用于細(xì)胞固定后再染色，而hoechst33342則可以對活細(xì)胞直接進(jìn)行染色！

是一種可對DNA染色的細(xì)胞核染色試劑，常用于細(xì)胞凋亡檢測. 碘化丙啶（Propidium Iodide, PI）是一種核酸染料(紅色），它不能透過完整的細(xì)胞膜，但凋亡中晚期的細(xì)胞和壞死細(xì)胞由于細(xì)胞膜通透性的增加，PI 能夠透過細(xì)胞膜而使細(xì)胞核染紅.用PI單一染色觀測培養(yǎng)細(xì)胞，只能表示細(xì)胞的壞死情況，而不是凋亡（當(dāng)然晚期凋亡PI亦可著色）。但是如果您只是想知道細(xì)胞的死亡情況，而不是仔細(xì)區(qū)分壞死或凋亡，那么PI單一染色也可以。但是如果您一定要認(rèn)定細(xì)胞的凋亡，那么PI單一染色顯然不夠！

細(xì)胞凋亡早期,細(xì)胞膜標(biāo)志發(fā)生改變.其中,磷脂酰絲氨酸

(Annexin-V,PS)外翻 ,Annexin-V 在Ca+存在的條件下與其高親和力特異性結(jié)合.這樣,Annexin-v 染色陽性,表示細(xì)胞處于早期凋亡狀態(tài).Annexin-V結(jié)合不同的熒光抗體,就可以利用流式細(xì)胞儀、熒光顯微鏡以及共聚焦激光掃描顯微鏡檢測細(xì)胞凋亡的發(fā)生。Annexin V用FITC標(biāo)記發(fā)綠色熒光；如果用PE標(biāo)記就發(fā)紅色熒光。

JC-1是一種陽離子染料，可以在線粒體內(nèi)聚集，低濃度時主要以單體(monomer)存在，發(fā)射光以綠光(～525nm)為主；而在高濃度時則可以形成多聚體(aggregation)，發(fā)射光以紅光(-590nm)為主。線粒體本身存在一定的極性

(polarization)，其外膜為負(fù)極，內(nèi)膜為正極。電位差由Ca2+、Na+和H+流調(diào)控。當(dāng)線粒體狀態(tài)良好時對JC-l攝取量少，因而在線粒體內(nèi)主要以單體的形式存在綠光強(qiáng)度/紅光強(qiáng)度的比值較高。在線粒體發(fā)生去極化(depolarization)時，線粒內(nèi)JC-l的濃度較高，多以多聚體的形式存在，綠光強(qiáng)度/紅光強(qiáng)度的比值降低。JC-1染色的綠光強(qiáng)度/紅光強(qiáng)度僅取決于線粒體的膜電勢(membrane potential)，而與線粒體的形態(tài)、體積和密度都無關(guān)，因而能更好地反映線粒體的功能狀態(tài)。由于凋亡發(fā)生的早期存在線粒體的去極性，因此，JC-1染色被用于檢測凋亡的早期發(fā)生。其實驗方法如下。 

JC-l染色非常簡單。首先可將成品JC-1以DMSO配成儲存液(1～5mg/ml)，儲存于-20℃，用時以培養(yǎng)液稀釋至10ug/ml終濃度。對貼壁細(xì)胞可以直接棄去培養(yǎng)液，漂洗細(xì)胞后直接加入染色液，10-30min后在熒光顯微鏡下或者激光共聚焦下觀察。線粒體狀態(tài)好時細(xì)胞以綠色為主，當(dāng)紅光信號增強(qiáng)時，紅綠相疊，以橙色為主。該染色運用于懸浮細(xì)胞時還可以通過流式細(xì)胞儀進(jìn)行檢測，收集紅/綠信號強(qiáng)度，計算其強(qiáng)度比。

Calcein -AM本身并不是熒光分子，但通過活細(xì)胞內(nèi)的酯酶作用，Calcein -AM能脫去AM基，產(chǎn)生的Calcein能發(fā)出強(qiáng)綠色熒光（激發(fā)：490 nm，發(fā)射：515 nm）。因此Calcein -AM僅對活細(xì)胞染色

原理： 

細(xì)胞損傷或死亡時，臺盼藍(lán)可穿透變性的細(xì)胞膜，與解體的DNA 結(jié)合，使其著色。而活細(xì)胞能阻止染料進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)。故可以鑒別死細(xì)胞與活細(xì)胞。  

用品： 

1. 4%臺盼藍(lán)母液：稱取4g臺盼藍(lán)，加少量蒸餾水研磨，加雙蒸水至100ml，用濾紙過濾，4度保存。使用時。用PBS稀釋至0.4%。 2. 吸管、血細(xì)胞計數(shù)板、顯微鏡  

步驟： 

1、制備單細(xì)胞懸液。并作適當(dāng)稀釋（106 細(xì)胞/ml） 2、染色：細(xì)胞懸液與0.4%臺盼藍(lán)溶液以9:1混合混勻。 3、計數(shù)：在三分鐘內(nèi)，用計數(shù)板分別計數(shù)活細(xì)胞和死細(xì)胞  

結(jié)果統(tǒng)計： 

鏡下觀察，死細(xì)胞被染成淡藍(lán)色，而活細(xì)胞拒染。 根據(jù)下式求細(xì)胞活力： 

活細(xì)胞率（%）= 活細(xì)胞總數(shù)/（活細(xì)胞總數(shù)+死細(xì)胞總數(shù)）×100  

注意事項：臺盼藍(lán)染細(xì)胞時，時間不宜過長。否則，部分活細(xì)胞也會著色，會干擾計數(shù)。

臺盼藍(lán)染色原理 

通常認(rèn)為細(xì)胞膜喪失完整性，細(xì)胞即可被認(rèn)為已經(jīng)死亡。臺盼藍(lán)(Trypan Blue)是檢測細(xì)胞膜完整性*常用的生物染色試劑。健康的正常細(xì)胞能夠排斥臺盼藍(lán)，而死亡的細(xì)胞，膜的完整性喪失，通透性增加，細(xì)胞可被臺盼藍(lán)染成藍(lán)色。依據(jù)此原理，細(xì)胞經(jīng)臺盼藍(lán)染色后，可通過顯微鏡，直接鏡下計數(shù)或拍照后計數(shù)，實現(xiàn)對細(xì)胞存活率比較**的定量分析。 

試述臺盼藍(lán)染發(fā)鑒別死活細(xì)胞的原理，試分析染色時間過長本來是活細(xì)胞也被染色的原因  

死細(xì)胞的細(xì)胞膜無屏障作用，臺盼藍(lán)馬上進(jìn)入細(xì)胞而顯藍(lán)色。活細(xì)胞細(xì)胞膜有選擇透性，對臺盼藍(lán)的透性小，進(jìn)入細(xì)胞慢。若染色時間過長，臺盼藍(lán)可能通過胞吞或胞飲作用進(jìn)入細(xì)胞。